Nieren und Kreislaufforschung
P079: Ulrich Rother, Chirurgische Klinik
Querschnittsuntersuchung der Muskelperfusion bei Patienten mit pAVK durch nicht-invasive MSOT
Laufzeit: 01.03.2021 – 28.02.2022
Ziel der Studie ist die Definition eines unabhängigen Parameters zur diagnostischen Beurteilung der Perfusionssituation des Wadenmuskels basierend auf der MSOT-Methode in einem Querschnittskollektiv von gesunden Probanden und Patienten mit unterschiedlichen pAVK-Stadien (Studiengruppe 1). Die Validierung der Ergebnisse wird anhand einer unabhängigen Validierungsgruppe (Studiengruppe 2) durchgeführt werden.
P093: Kaveh Roshanbinfar, Nephropathologische Abteilung
Vaskularisierung eines ECM-nachahmenden Hydrogels
Laufzeit: 01.09.2021 – 31.08.2022
Unser Ziel ist es, multizelluläre Gewebe auf der Basis von hiPSC-Endothelzellen und Kardiomyozyten in einem Hydrogel auf Kollagenbasis herzustellen, das die faserige Struktur der nativen Herzmatrix nachahmt. Wir werden untersuchen, ob solche Hydrogele eine geeignete Umgebung für die Verbesserung der Prävaskularisierung mit hiPSC-Endothelzellen bieten und ob die Reifung der Kardiomyozyten sowie die Prävaskularisierung in 3D-entwickelten multizellulären Herzgeweben verbessert wird.
P103: Robert Becker, Nephropathologische Abteilung
Untersuchung der Rolle von Phosphorylierung bei der Bildung des Kernmembran-MTOC
Laufzeit: 01.04.2022 – 31.03.2023
Phosphorylierung ist ein wichtiger Mechanismus zur Regulierung der MTOC-Aktivität am Zentrosom. Ob auch andere, nicht-zentrosomale MTOCs durch Phosphorylierung reguliert werden, ist unbekannt. Unser Ziel ist es, die Rolle von Phosphorylierung bei der MTOC Bildung an der Kernmembran zu bestimmen. Dazu werden wir die Rolle von spezifischen Kinase/Phosphatase-Kandidaten untersuchen sowie Screening-Ansätze nutzen um neue Regulatoren des Kernmembran-MTOCs zu identifizieren.
P108: Nina Sopel, Medizinische Klinik 4
Charakterisierung von Exosomen und Nanopartikeln
Laufzeit: 01.05.2022 – 30.04.2023
Dieses Projekt untersucht die Zell-Zellkommunikation über Exosomen und funktionalisierte Nanopartikel bezogen auf Glomerulopathien.
Wir werden Mikrovesikel aus glomerulären Zellen hinsichtlich Größe und Oberflächenmarker mittels Elektronen- und Fluoreszenzmikroskopie, sowie Durchflusszytometrie analysieren. Außerdem werden wir funktionalisierte Nanopartikel in vitro in Zellkultur und in vivo im Zebrafischmodell untersuchen. Des Weiteren soll ein Autophagiemodell im Zebrafisch etabliert werden.